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Laboratorio di Fisiologia e Biofisica  

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Linee di ricerca

Le caratteristiche funzionali delle membrane dipendono dalla loro struttura e composizione. Interesse del laboratorio è lo studio di sistemi di trasporto (trasportatori e canali). Studio che, a partire dai sistemi in vivo, può avvalersi dell’espressione eterologa e/o dell’incorporazione di proteine in membrane artificiali. Di interesse più applicativo lo studio sulla elettroneurostimolazione e la sua ottimizzazione per applicazioni cliniche.

  1. Studio del trasporto di materia e caratterizzazione elettrica delle membrane cellulari e delle barriere complesse.
  2. Elettrofisiologia delle cellule eccitabili: caratterizzazione, correnti ioniche e canali di membrana.
  3. Ricostituzione funzionale di canali purificati in membrane artificiali. Incorporazione di proteine in matrici di varia composizione lipidica ed effetto della composizione sulle proprietà di membrana. Modulazione della conduttanza elettrica in doppi strati lipidici piani.
  4. Espressione di proteine trasportatrici di membrana in sistemi modello.
  5. Ottimizzazione dei blocchi periferici con elettroneurostimolazione: elettrofisiologia, materiali ed applicazioni cliniche.

 

Tecniche

  • Elettrofisiologia (current-, voltage-clamp)
  • Espressione di proteine in oociti di Xenopus laevis e cellule in coltura
  • Determinazione della attività di trasporto in cellule e vescicole di membrana con metodi radiochimici
  • Estrazione, purificazione e analisi di lipidi di membrana con metodi cromatografici
  • Analisi di proteine mediante westernblot, spettrometria e dosaggi enzimatici.
  • Simulazioni computerizzate (modelli matematici)

 

Selezione pubblicazioni

  1. Marciani P, Trotti D, Hediger MA, Monticelli G (2004) Modulation of DMT1 activity by red-ox compounds J Memb Biol197:91-99.
  2. Monticelli G (2003) Some remarks about a mechanistic model of transport processes in porous membranes J Membrane Sci214:331-333.
  3. Castagna M, Vincenti S, Marciani P, Sacchi VF (2002) Inhibition of the lepidopteran amino acid cotransporter KAAT1 by phenylglyoxal: role of arginine 76 Ins Mol Biol11:283-289.
  4. Leonardi MG, Marciani P, Cappellozza S, Montorfano G, Giordana B, Monticelli G (2001) Effects of fenoxycarb on brush border membrane of larval midgut in the fifth instar of the silkworm, Bombyx mori (Lepidoptera, Bombycidae). Pest Biochem Physiol70:42-51.
  5. McKie AT, Marciani P, Rolfs A, Brennan K, Wehr K, Barrow D, Bomford A, Peters TJ, Farzaneh F, Hediger MA, Hentze MW, Simpson RJ (2000) A novel duodenal iron-regulated membrane protein (Ireg1) implicated in the basolateral transfer of iron to the circulation. Mol Cell5:299-309.
  6. Ambrosino G, Monticelli G (2002) Posizionamento ottimale degli elettrodi per l’esecuzione di un blocco periferico con E.N.S.; Peripheral blocks using a nerve stimulator: ground electrode positioning ALR (J. Local & Reg. Anaesth. Pain Ther.)11:150-158.
  7. Ambrosino G, Monticelli G (1999) Blocco dell'ischiatico per via anteriore con ENS: variazioni di resistenza elettrica vs profondità dell'ago-elettrodo; Ischial block by anterior - access ENS: variations in electrical resistance with needle-electrode depth ALR (J. Local & Reg. Anaesth. Pain Ther.)8:3-11.
  8. Lindi C, Montorfano G, Marciani P (1998) Rat erythrocyte susceptibility to lipid peroxidation after chronic ethanol intake. Alcohol16:311-316.
  9. Ambrosino G, Monticelli G, Lanzafame L, Furia M (1996) Blocchi periferici con ENS: elettrofisiologia, materiali ed applicazioni cliniche; Peripheral blocks with ENS: electrophysiology, materials and clinical applications ALR (J. Local & Reg. Anaesth. Pain Ther.)5:156-172.
  10. Gallucci E, Micelli S, Monticelli G (1996) Pore formation in lipid bilayer membranes made of phosphatidylinositol and oxidized cholesterol followed by means of alternating current Biophysical J71:824-831.

 

Links 

http://users.unimi.it/monticy/homegm.htm (sito di G.M.)

http://users.unimi.it/monticy/homedida.htm (sito didattico di G.M.)

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